HOW TO USE THE SYSTEM / LINEE GUIDA SULL’UTILIZZO DEL SISTEMA

ASSEMBLING OF COMPONENTS

Only use components approved by VACUTEST KIMA.

When assembling components make sure the needle or Luer is correctly and completely threaded onto the holder

ASSEMBLAGGIO COMPONENTI

Utilizzare (assemblare) esclusivamente componenti approvati da VACUTEST KIMA.

Nell’assemblaggio accertarsi del completo e corretto avvitamento dell’ago o dell’adattatore luer alla camicia.

SPECIMEN COLLECTION

DO NOT excessively palpate the venipuncture area;
DO NOT proceed with venipuncture until the antiseptic adopted for the skin cleansing has evaporated completely;
DO NOT keep tourniquet in place for too long.

Order of draw
When multiple blood collections are performed, we counsel following the order of draw recommended by the CLSI (Clinical and Laboratory Standard Institute), thereby avoiding any possibility of cross contaminations of samples by the additives in the test tubes.

ESECUZIONE DEL PRELIEVO

un’eccessiva palpazione per la localizzazione del sito del prelievo;
di procedere alla venopuntura fintantoché il disinfettante utilizzato per la pulizia della cute non è completamente evaporato;
l’uso prolungato del laccio emostatico.

Sequenza delle provette nei prelievi multipli
Nei prelievi multipli si consiglia di seguire la sequenza di riempimento delle provette raccomandata da CLSI (Clinical and Laboratory Standard Institute), ciò per ridurre al minimo la possibilità di contaminazioni crociate del campione da parte degli additivi presenti nelle provette:

1.			Test tube with sodium citrate
2.			Test tube for serum with clot activator without gel
3.			Test tube for serum with clot activator and gel
4.			Test tubes with Heparin (with or without gel)
5.			Test tubes with EDTA
6.			Test tubes with inhibitors of the glycolysis

1.			Provette con sodio citrato
2.			Provette per siero con attivatore della coagulazione senza gel
3.			Provette per siero con attivatore della coagulazione e gel separatore
4.			Provette con eparina con o senza gel separatore del plasma
5.			Provette con EDTA
6.			Provette con inibitori della glicolisi

Note
When using a winged blood collection set for venipuncture (butterfly needle) and coagulation tube is the first tube to be drawn, a discard tube should be drawn first. The discard tube must be used to fill the blood collection tubing dead space and to assure maintenance of the proper anticoagulant/blood ratio and need not be completely filled. The discard tube should be a non- additive or a coagulation tube.

Filling of the test tubes
All plastic test tubes contain additives. It is important to ensure the correct filling of all the types of test tubes to guarantee the correct blood-additive ratio.

Before removing the test tube MAKE SURE blood flow has ceased.

The tolerance of ±10% respect to the filling mark indicated in the label, ensures a correct blood-additive ratio in the test tube (as per the international guidelines ISO, EN and CLSI).

Correct sample homogenization
Gently mix the test tubes by slow inversions (at least 6-8 times) immediately after collection. (1)
DO NOT shake the sample

Preservation of the sample for the subsequent dispatch to the laboratory
The test tube with the sample must be kept vertically with the stopper upwards

Storage temperature affects sample stability before and after centrifugation and may varies on the basis of the types of tests to be applied. (1)

We recommend delivering samples to the laboratory as quickly as possible.

Carefully follow the laboratory protocols implemented.

Centrifugation (1)
The centrifugation force applied to the sample varies according to the centrifuge radius and RPM (revolutions per minute) applied.
This is why the centrifugal force applied to the sample is expressed as g (gravity) or RCF (relative centrifugation force), calculated as follows:

g=1,118x10-5 x R x S2

(where g = relative centrifugation force, R = radius of the centrifuge rotor expressed in cm, S = revolutions per minute - RPM).

As an alternative to this formula, RPM can be calculated by means of a nomograph.

(1) More detailed guidelines are reported in the technical information listed for each test tube type.

TECHNICAL AND SCIENTIFIC ASSISTANCE

Technical and scientific assistance is available from our team, applicable both from our office and at the client’s premises.

Vacutest Kima can provide a training service.
The service is provided on request for both the introduction of the sample collection system (blood and urine) and training on correct collection, pre-analytical phase, sample transport and biological risks.

Nota
Quando viene usato per il prelievo venoso un set con ago a farfalla e come prima provetta una per i test di coagulazione, deve prima essere utilizzata una provetta di scarto. Questa deve essere usata per riempire lo spazio vuoto del tubicino di raccordo e assicurare così il mantenimento del corretto rapporto anticoagulante/sangue. La provetta di scarto deve essere una provetta priva di additivi o una provetta per i test di coagulazione.

Riempimento delle provette
Tutte le provette in plastica contengono additivi. È pertanto importante il corretto riempimento di tutte le tipologie di provette al fine di garantire il corretto rapporto sangue-addittivo presente all’interno della provetta.

Prima di togliere la provetta ACCERTARE che l’afflusso del sangue sia cessato.

La tolleranza di ± 10% rispetto al valore nominale di riempimento, indicato sull’etichetta anche mediante evidenti indicazioni grafiche, assicura un corretto rapporto tra sangue raccolto e additivo presente nella provetta (nel rispetto di quanto indicato dalle linee guida internazionali ISO, EN e CLSI).

Corretta omogeneizzazione del campione
Subito dopo il prelievo agitare tutte le provette delicatamente per inversione lenta (almeno 6-8 volte). (1) Evitare l’agitazione eccessiva del campione (non shakerare).

Conservazione del campione per il successivo invio al laboratorio
La provetta con il campione va conservata in posizione verticale con il tappo rivolto verso l’alto

La stabilità del campione è influenzata dalla temperatura di conservazione prima e dopo l’eventuale centrifugazione. Differisce inoltre in funzione dei test analitici ai quali dovrà essere sottoposto il campione. (1)

Si consiglia l’invio del campione al laboratorio nel più breve tempo possibile.

Seguire comunque scrupolosamente il protocollo implementato dal proprio laboratorio di riferimento.

Centrifugazione (1)
La forza centrifuga a cui è sottoposto il campione varia in funzione del raggio della centrifuga e dei giri per minuto RPM (revolutions per minute) applicati. Per tale motivo la forza centrifuga a cui sottoporre il campione è espressa in g (gravità) o RCF (relative centrifugal force), così calcolata:

g=1,118x10-5 x R x S2

(dove g = alla forza centrifuga relativa, R = raggio del rotore espresso in cm, S = giri per minuto della centrifuga RPM).

In alternativa alla suddetta formula, per il calcolo degli RPM a cui sottoporre i campioni può essere utilizzato un nomografo.

(1) Più dettagliate linee guida sono riportate nelle sezioni tematiche delle singole tipologie di provette.

ASSISTENZA TECNICA E SCIENTIFICA

Per l’assistenza tecnica e scientifica è disponibile un team informativo e di supporto anche presso il cliente.

Vacutest Kima può fornire un servizio di addestramento e formazione. Il servizio è fornito su richiesta per l’introduzione del proprio sistema di prelievo del campione (sangue e urine) e per addestramento e aggiornamento su argomenti quali il corretto prelievo del campione, la fase preanalitica, il trasporto del campione e il rischio biologico.

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